產(chǎn)品說(shuō)明
3D組織器官芯片模型
SynBBB血腦屏障模型,SynTumor 3D腫瘤模型，SynTox 3D毒理模型，SynRAM 3D炎癥模型，synvivo血管模型芯片，SynALI氣液界面肺模型
一、SynALI基于氣液界面肺模型
用于在內(nèi)皮細(xì)胞和上皮細(xì)胞之間形成氣液界面的設(shè)備示意圖。 空氣（或上皮）通道通過(guò)微制造的多孔結(jié)構(gòu)與雙流體（基底外側(cè)）通道隔開(kāi)。 右圖顯示從頂部和橫截面視圖看時(shí)細(xì)胞的定向。
SynALI是模仿肺結(jié)構(gòu)的新型氣液界面模型。該裝置由一個(gè)塑料的，一次性的，光學(xué)透明的微流控芯片組成，該芯片被上皮細(xì)胞功能化，周?chē)难芟到y(tǒng)由內(nèi)皮細(xì)胞組成。 SynALI結(jié)構(gòu)在氣道細(xì)胞之間維持氣液界面。結(jié)果，形成氣管小管，其運(yùn)輸粘液并被周?chē)纳掀ぞS持。細(xì)胞形態(tài)，氣道結(jié)構(gòu)，細(xì)胞間相互作用以及氣道功能（例如粘液運(yùn)輸，睫狀跳動(dòng)，治療性改善）可以在正常和患病情況下實(shí)時(shí)可視化和量化。
du特功能包括：
●形態(tài)逼真的氣道結(jié)構(gòu)和環(huán)境
●穿過(guò)上皮和內(nèi)皮的氣液界面（ALI）
●體內(nèi)血流動(dòng)力學(xué)切應(yīng)力
●實(shí)時(shí)可視化細(xì)胞和屏障功能，包括黏液，睫狀跳動(dòng)，免疫細(xì)胞相互作用和治療性篩選
●穩(wěn)健易用的協(xié)議
使用SynALI設(shè)備開(kāi)發(fā)的模型示例:
肺泡肺模型具有人微血管肺內(nèi)皮細(xì)胞和肺泡上皮I型和II型細(xì)胞。
小氣道肺模型–與人支氣管上皮細(xì)胞（HBEC）和肺微血管內(nèi)皮細(xì)胞共培養(yǎng)。
產(chǎn)品購(gòu)買(mǎi)選項(xiàng)
芯片：根據(jù)您的特定研究應(yīng)用，您可以從IMN2線性芯片配置中選擇。
試劑盒：運(yùn)行SynALI分析所需的基本組件都可以作為試劑盒購(gòu)買(mǎi)。 有兩種格式：
入門(mén)套件：shou次購(gòu)買(mǎi)時(shí)請(qǐng)選擇
10個(gè)SynALI芯片-IMN2線性（3um縫）
配件，包括油管，夾具，針頭和注射器
氣動(dòng)灌注裝置（灌注管路以除去空氣時(shí)需要）
檢測(cè)試劑盒：如果您以前購(gòu)買(mǎi)過(guò)氣動(dòng)灌注設(shè)備，請(qǐng)選擇此試劑盒格式
10個(gè)SynALI芯片– IMN2 linear（3um縫）
配件，包括油管，夾具，針頭和注射器
（套件不包括建立氣液接口所需的氣泵）
SynVivo平臺(tái)用于創(chuàng)建人工片上呼吸道
來(lái)自阿拉巴馬大學(xué)伯明翰分校的研究人員報(bào)告了SynVivo平臺(tái)在開(kāi)發(fā)人類(lèi)片上氣道模型中的應(yīng)用。結(jié)合新穎的微光學(xué)相干斷層掃描（?OCT），該模型可以對(duì)睫狀運(yùn)動(dòng)進(jìn)行wu創(chuàng)定量成像。成像包括搏動(dòng)頻率和粘膜纖毛轉(zhuǎn)運(yùn)。
這種微流體裝置的優(yōu)勢(shì)在于，可以為氣道上皮和相鄰的內(nèi)皮形成完整的管腔。 UAB醫(yī)學(xué)院兒科肺病學(xué)家兼助理教授Jennifer Guimbellot博士說(shuō)：“這是模型發(fā)展的一大，該模型概括了細(xì)胞的分化和組織成管狀結(jié)構(gòu)，類(lèi)似于小氣道和微脈管系統(tǒng)�！�
氣道模型是通過(guò)氣液界面（ALI）將原代上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞共同培養(yǎng)而開(kāi)發(fā)的。它是使用可實(shí)時(shí)定量成像的定制SynVivo微流體芯片創(chuàng)建的。通過(guò)在生理?xiàng)l件下監(jiān)測(cè)活性纖毛，產(chǎn)生粘液的細(xì)胞和細(xì)胞功能的生物標(biāo)志物，證明了已開(kāi)發(fā)的氣道上芯片模型的功能。
研究人員的驗(yàn)證
醫(yī)學(xué)教授兼格雷戈里·弗萊明·詹姆斯囊性纖維化研究中心主任史蒂芬·羅博士說(shuō)：“開(kāi)發(fā)合適的模型來(lái)模擬人類(lèi)完整的粘膜纖毛轉(zhuǎn)運(yùn)設(shè)備是一項(xiàng)重要的工作，對(duì)氣道疾病的生物學(xué)研究具有重要意義包括囊性纖維化”。發(fā)達(dá)的氣道模型代表了個(gè)性化醫(yī)學(xué)的新方法，并作為藥物開(kāi)發(fā)的預(yù)測(cè)工具。
共培養(yǎng)氣道微流模型，用于顯微鏡和微光學(xué)相干斷層掃描成像
作者：劉忠裕，斯蒂芬·麥凱，迪倫·戈登，賈斯汀·安德森，達(dá)斯汀·W·海斯考克，查爾斯·加森，吉列爾莫·特爾尼，喬治·所羅門(mén)，卡皮爾·潘特，巴拉巴斯卡·普拉巴哈卡潘迪安，史蒂文·羅維和珍妮弗·吉姆貝洛特。
生物醫(yī)學(xué)光學(xué)快報(bào)弟10期，弟5414-5430頁(yè)（2019）。
微流控芯片中的上皮和內(nèi)皮共培養(yǎng)。 （a）和（b）融合共培養(yǎng)芯片的相襯圖像，中心通道上皮細(xì)胞，周?chē)ǖ纼?nèi)襯內(nèi)皮細(xì)胞。 （c）通道頂部和底部的相襯，顯示組織和血管通道中匯合的單層。 這些圖像顯示了中央通道頂部和底部以及一側(cè)通道的細(xì)胞匯合處的中央透明管腔。 （d）共培養(yǎng)芯片的3-D重建共聚焦橫截面圖像，顯示了三個(gè)通道中的管腔形成（10倍放大）。 摘自Liu et al 2019。
分化的上皮細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞的免疫熒光。 （a）Ecadherin（綠色），上皮細(xì)胞粘附素蛋白。 VE-鈣黏著蛋白（紅色），內(nèi)皮細(xì)胞黏附蛋白。 （b）ZO-1（紅色）染色中央通道上皮細(xì)胞的緊密連接，以及血管通道的VE-鈣黏著蛋白染色（綠色）。 （c）Muc5ac（綠色），上皮細(xì)胞內(nèi)部的細(xì)胞內(nèi)粘蛋白染色。 （d）有紅色箭頭指示的纖毛上皮細(xì)胞。
Small Airway Lung Model Exhibits Mucus Formation and Biomarker Staining
A-C Confluent co-culture of lung endothelial and epithelial cells following ALI development highlighting mucus formation and staining of biomarkers in epithelial cells. D-E Biomarker staining for tight junction markers (VE-Cadherin and ZO-1) in endothelial cells.
Alveolar Lung Model: Co-Culture and Tri-Culture Options
Co-Culture with biomarker staining
Top image shows lung microvascular endothelial and epithelial cell co-culture in the SynALI devices. Bottom images: Red: Type I Cells: HT_56 antibody. Green: Type 2 Cells: HT_280 antibody. Blue: Nuclei
Tri-culture with Lung Endothelial Cells, Fibroblasts, Epithelial Cells
Phase images of SynALI Alveolar model tri-culture: Top channel: Lung microvascular Endothelial cells. Middle channel: Lung Fibroblasts. Bottom channel: Lung Epithelial cells.
Biomarker Staining
Triculture Alveolar lung model showing biomarker staining – VE-Cadherin and Nuc Blue in lung endothelial cells, Lung Fibroblast Surface protein and Nuc Blue in the middle fibroblast layer and E-Cadherin, and Nuc Blue in the epithelial cell (bottom)
Long Term Tri-Culture and Mucus Secretion
Alveolar Lung Model: Left image shows culture over weeks1 through week 6. Mucus secretion is shown on the right.
Assay Development and Screening using SynALI:
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Monoculture using primary epithelial cells
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Co-Culture with endothelial cells
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Tri-culture with fibroblasts
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Toxicity assays
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Biomarker analysis
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Therapeutic screening
Endpoints to choose from:
Vascular permeability using fluorescent-tagged molecule, ROS, biomarkers, collect cells or effluents for downstream genomic, proteomic, or transcriptomic analysis
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