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        2018-05-17至2018-05-18 上海
        導(dǎo)航

        細胞治療與基因治療---載體純化

        來源:生物制品圈

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        細胞治療是將細胞轉(zhuǎn)移到一個病人身上,其目的是改善或治療疾病。細胞治療策略包括分離和轉(zhuǎn)移特定的干細胞群,執(zhí)行效應(yīng)細胞,誘導(dǎo)成熟細胞成為多能性細胞,以及成熟細胞的重新編程。


        基因治療是一種新的治療手段,是指將外源正常基因?qū)氚屑毎?,以糾正或補償因基因缺陷和異常引起的疾病,以達到治療目的。即將外源基因通過基因轉(zhuǎn)移技術(shù)將其插入病人的適當?shù)氖荏w細胞中,使用外源基因制造的產(chǎn)物來治療疾病。從廣義說,基因治療還可包括從DNA水平采取的治療某些疾病的措施和新技術(shù)。


        第一個基因療法獲準正式上市。這種CAR-T細胞療法被批準授予諾華制藥以商品名Kymiah用于臨床,治療25歲以下青少年兒童復(fù)發(fā)性或難治性B細胞急性淋巴細胞白血病(ALL)。FDA在官網(wǎng)稱,這次批準是一次歷史性行動,將為癌癥和其他致命性嚴重疾病開創(chuàng)全新療法。


        2013年歐洲Glybera是用于治療脂蛋白脂酶缺乏遺傳?。↙PLD)的基因藥物。


        通過一種腺相關(guān)病毒(AAV),將產(chǎn)生功能性脂蛋白脂肪酶的基因遞送到患者骨骼肌,患者接受治療后胰腺炎發(fā)病率大大降低,并可以放松飲食限制,提高生活質(zhì)量。2003年,中國賽百諾公司生產(chǎn)的重組腺病毒P-53 (Gendicine) 成功獲得了國家食品藥品監(jiān)督管理局SFDA 的生產(chǎn)批文,用于治療頭頸部腫瘤的基因療法藥物。


        細胞及基因治療用基因載體的分離純化策略:


        1.細胞及基因治療的載體,一般使用病毒或者超螺旋質(zhì)粒為載體。載體顆較大,幾十至上百納米。在細胞和基因治療中使用的較多的載體有:腺病毒(AdV),逆轉(zhuǎn)錄病毒(Rv),腺相關(guān)病毒(AAV),質(zhì)粒,慢病毒(LV)等。


        2.基因載體顆粒一般加大,所以純化時載量偏低


        3.一般基因載體顆粒帶有負電荷。


        4.病毒顆粒一般為蛋白衣殼和核酸組成,所以對于剪切力比價敏感。


        細胞治療與基因治療常用載體特性


        基因載體分離純化工藝:


        病毒類載體具有類似的結(jié)構(gòu)表達和擴增系統(tǒng)所以病毒類載體可以使用通用的平臺工藝:


        腺病毒載體:


        腺病毒(adenovirus)是一種沒有包膜的直徑為70~90 nm的顆粒,由252個殼粒呈廿面體排列構(gòu)成。


        用于治療的腺病毒在純度、活性以及病毒制品中熱源、支原體、雜蛋白、牛血清、Benzonase 的殘留都有嚴格的指標。這就要求在設(shè)計生產(chǎn)工藝時,需要選用特異性好,高效的方法分離純化腺病毒載體。層析方法純化腺病毒已成為規(guī)模生產(chǎn)的首選方法。以往層析純化腺病毒的方法有很多,如:利用金屬螯和(IMAC Bestarose FF )+凝膠過濾(S-500 HR、 4FF)、離子交換層析(Q Bestarose XL ) 以及反相層析的方法 等純化方法。 中試或生產(chǎn)規(guī)模的腺病毒純化使用QXL陰離子交換,和Bestarose 4 FF分子篩組份分離。


        病毒類載體的通用平臺工藝


        病毒類載體的通用平臺工藝:


        腺病毒純化工藝:


        第一步:細胞分離:腺病毒培養(yǎng)過程中部分腺病毒分泌到培養(yǎng)基中,部分在細胞中。使用離心或中空纖維將培養(yǎng)基上清和細胞分離,細胞采用凍融的方法裂解或去污劑Triton X-100(濃度通常1%)。加入Benzonase 酶切斷染色體DNA,降低樣品粘度。


        第二步:澄清,使用中空纖維或離心去除細胞碎片。


        第三步:濃縮更換緩沖液,將培養(yǎng)上清(如果上清中的病毒顆粒較多,舍棄影響收率)與澄清后的樣品混合,使用中空纖維濃縮,更換為離子交換的緩沖液。使用Q Bestarose XL其緩沖液為50mM TrisHcl ,5% glycerol ,pH 8.0。


        第三步:陰離子交換純化, 使用 Q Bestarose XL ,采用Nacl 洗脫,通常腺病毒在0.4-0.6M Nacl濃度時被洗脫。洗脫后腺病毒在高鹽緩沖液中。


        第四步:分子篩組份分離, 使用Bestarose 4/6 FF,上樣一般在5-10%,更換緩沖液。


        腺相關(guān)病毒純化:


        腺相關(guān)病毒(adeno-associated virus AAV)是微小病毒科,無包膜的20面體結(jié)構(gòu)的病毒。病毒顆粒20-26nm。目前還沒有發(fā)現(xiàn)AAV對人體致病性,重組的AVV去除了96% 的AAV基因組,進一步確保安全性,2012年10月歐洲批準了第一個基因治療藥物Glybera,就是利用重組的AAV藥物。


        腺相關(guān)病毒的純化近年來有許多報道;多是采用傳統(tǒng)的氯化銫密度梯度超速離心的方法,由于AAV耐受氯仿,所以可以使用氯仿抽提的方法純化AAV-2 載體。氯化銫、氯仿為有毒試劑,在制藥生產(chǎn)中使用有潛在的危害;親和層析(AVB sepharose, Heparin等)的方法是可以使用于生產(chǎn),但其產(chǎn)品中的殘留量必須是痕量的及有經(jīng)過認證的嚴格檢測,這就增加了質(zhì)檢的項目和成本,對工藝的穩(wěn)定性提出了更高的要求。Nicole Brument 等2002 年提出了使用2 步離子交換(SP Sepharose HP; Source15Q) 方法純化 AAV病毒。陰離子交換是一個純化病毒顆粒的最佳的方法,其中Q XL 可以分離AAV在表達過程中的空病毒顆粒。


        AAV可以按照病毒載體的通用工藝,設(shè)計生產(chǎn)工藝:


        QXL:Q Bestarose XL 捕獲病毒顆粒,同時去除空的病毒顆粒


        Q Bestarose XL捕獲腺病毒顆粒


        腺相關(guān)病毒顆粒較小,使用凝膠過濾層析的介質(zhì)可以使用Chromdex 200 PG精細純化步驟。


        Chromadex 200 分離腺相關(guān)病毒


        慢病毒純化工藝:


        慢病毒包括靈長類慢病毒,如人 類免疫缺陷病毒(HIV) 和猴免疫缺陷病毒(SIV) ,以及非靈長類慢病毒如貓免疫缺陷病毒( FIV) 、馬傳染性貧血病毒(EIAV) 、牛免疫缺陷病毒(BIV) 和維斯納-梅迪病毒(VMV)等。目前,HIV-1、HIV-2、SIV、FIV 及EIAV被廣泛研究用作基因治療的載體,而其中又以HIV-1最為熱門。成熟的HIV-1 病毒直徑100~120nm、呈20 面體對稱結(jié)構(gòu)、球形,電鏡下可見一致密圓錐狀核心,內(nèi)有病毒RNA 分子和酶,后者包括逆轉(zhuǎn)錄酶、整合酶(integrase) 和蛋白酶(protease)。


        不同層析介質(zhì)分離慢病毒載體


        質(zhì)粒純化工藝:


        質(zhì)粒DNA (pDNA) 又稱基因疫苗。是結(jié)構(gòu)簡單的非病毒載體, 基因疫苗又稱為核酸疫苗(nucleic acid vaccine),是指將編碼某種抗原的外源基因與質(zhì)粒載體重組,構(gòu)建出真核表達載體,通過肌肉注射等途徑直接導(dǎo)入動物細胞后,能利用宿主細胞的蛋白質(zhì)合成系統(tǒng)合成外源抗原蛋白,并誘導(dǎo)宿主細胞產(chǎn)生對該抗原的體液和細胞免疫應(yīng)答,以達到預(yù)防和治療疾病的目的。由于一般的基因疫苗只含有DNA成份,因此,基因疫苗又常稱為DNA 疫苗(DNA vaccine)。由基因疫苗誘導(dǎo)機體產(chǎn)生的免疫應(yīng)答,稱為基因免疫(gene immunization) 或核酸免疫( nucleic acid immunization ) 或 DNA 免疫(DNA Immunization),在質(zhì)粒DNA 生產(chǎn)過程中需要去除的雜質(zhì)如表1 所示的大腸桿菌中的主要成分。


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        質(zhì)粒DNA的純化不同于病毒載體的純化,但是不同的質(zhì)??梢允褂孟嗤墓に嚻脚_。


        質(zhì)粒純化分為以下步驟:


        質(zhì)粒純化工藝路線


        1.發(fā)酵是生產(chǎn)質(zhì)粒DNA的第一的步驟,也是提高產(chǎn)量的一個較重要的步驟。通過優(yōu)化宿主細胞、培養(yǎng)條件(如:培養(yǎng)基、溫度、攪拌速度、通氣量、pH等) 可以提高質(zhì)粒DNA的產(chǎn)量。


        2.細胞收集可以選用離心、膜過濾的方法。離心是實驗室的常用方法,工業(yè)規(guī)模一般使用連續(xù)流離心機或膜過濾。


        3.裂解細胞的方法很多,如超聲破碎、高壓勻漿、凍融、酶裂解、堿裂解。質(zhì)粒DNA 對剪切力和化學(xué)試劑比較敏感,如果剪切力過大,質(zhì)粒DNA 將變性。堿裂解的方法是常用的。NaOH+SDS 可以使得細胞膜溶解,同時促進蛋白質(zhì)、核酸變性,并保持pDNA的活性。在堿裂解后,加入乙酸鉀,調(diào)pH 至5.5。使染色體DNA、蛋白變性沉淀。


        4.澄清:傳統(tǒng)使用離心機固液分離后超率濃縮。此步驟既可濃縮也可以更換緩沖液。


        去除RNA,使用凝膠過濾層析的組份分離模式,分離質(zhì)粒DNA和RNA。


        5.使用特異分離超螺旋和開環(huán)質(zhì)粒的層析介質(zhì)捕獲超螺旋質(zhì)粒。Plasimd Cap Mustang嗜硫親和層析介質(zhì)特異捕獲超螺旋DNA。


        6.使用陰離子交換層析介質(zhì)精純,去除內(nèi)毒素等雜質(zhì)。(生物谷Bioon.com)


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